材料与方法
1.1 样品采集
空气微生物采集方法：空气沉降法，时间为5分钟。在每个场地选择有代表性的5个点，同时测定其细菌、酵母菌和霉菌的数量。
酒醅等固态样品采集方法：由四周与中间取得混合原始样，再以四分法缩分取样，样品采集后立刻进行分离。
1.2 测定方法
微生物分离：参照沈萍等（2007）方法并稍做修改。
微生物数量分析：均采用平板稀释法。其中，细菌用牛肉膏蛋白胨培养基，酵母用YPD+链霉素培养基，霉菌用淀粉培养基+链霉素培养基。进行分离计数，设置4次重复。
细菌于36℃培养，酵母菌于28℃培养，霉菌于30℃培养，定时观察并计数。
1.3 统计分析
采用统计软件DPS进行分析，用LSD法分析对照和处理间的差异显著性（n=4）p<0.01或p<0.05水平，用Excel 2003作图，SPSS处理分析相关系数。
2 结果与分析
2.1 生产过程环境中空气微生物分布特点
宣酒芝麻香型白酒的生产主要在老车间与小窖群（新车间）两大车间进行，每个场地选择有代表性的5个点，并同时测定其细菌、酵母菌和霉菌的数量。结果显示三大类微生物数量呈现出一种基本走向，即细菌少于酵母且更少于霉藓，这一趋势在不同区域内保持一致，但各区域之间存在差异，小窖群中的微生物总量显著低于老车间，而这两者的变化趋势相似，其相关性分别达到0.984、0.961和0.938。此外，在堆积场和曲房内的空气中微生物总数明显高于饭场及窖池房，而此种差异极为显著（p<0.01）。
2.2 窖池内环境中微生物分布特点
在宣酒芝麻香型白酒生产过程中的窖池内部，由表所示，该地区的所有三个类型都表现出了层级结构，其中最下方即底部层段具有最高数量，最上方即顶部层段则拥有最低数字。这一差异是十分明确且不容忽视的。而对于露水而言，它们也遵循着同样的模式，只是在底部至顶部逐渐减少。但值得注意的是，对这些材料而言，我们没有找到任何可供研究的小米芽菇体验者数据或证据支持这一假设。因此，我们只能根据我们的直觉来推断这一可能的情况是否合理以及它如何影响最终产品质量。
3 讨论与结论
3· 环境中空气microbiome分布及其对堆积后的microbiome总量影响
由于宣酒芝麻香型白葡萄酒生产过程中的自然接种主要来自自身环境中airborne microorganisms，其中优势种群对整个发酿过程产生了重大影响。此外，与我们之前预期的一致，在所有三个类型——包括整个发酿周期——它们都表现出了一个共同趋势，即从较高到较低再次降至最高。这意味着尽管某些物质似乎更加适合某些组织，但实际上最佳条件却是另一种不同的组织。如果我们将这种观察应用到我们的产品线，那么它可能会给消费者带来惊喜，因为他们能够享受到一种全新的风味体验，同时又能保持传统工艺的手感。然而，我们还需要进一步研究，以确定这种可能性是否真实有效，以及它如何影响最终产品质量。